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PCR實驗室在操作時應(yīng)注意事項

發(fā)布時間:2020-12-08 09:53:21 文章作者:geermo

PCR實驗室在操作時應(yīng)注意事項

  PCR檢測微量感染因子時,容易因為污染的而導(dǎo)致各種問題,因此,進(jìn)行PCR操作時,操作人員應(yīng)該嚴(yán)格遵守一些操作規(guī)程,*大程度地降低可能出現(xiàn)的PCR污染或杜絕污染出現(xiàn)。

  (1)劃分操作區(qū):

  目前,普通PCR尚不能做到單人單管,實現(xiàn)完全閉管操作,但無論是否能夠達(dá)到單人單管,均要求實驗操作在三個不同的區(qū)域內(nèi)進(jìn)行,PCR的前處理和后處理要在不同的隔離區(qū)內(nèi)進(jìn)行:

 ?、贅?biāo)本處理區(qū),包括:擴(kuò)增摸板制備;

 ?、赑CR擴(kuò)增區(qū),包括:反應(yīng)液的配制和PCR擴(kuò)增;

 ?、郛a(chǎn)物分析區(qū),凝膠電泳分析,產(chǎn)物拍照及重組克隆制備。

  ※各工作區(qū)要具有一定隔離,操作器材專用,要有一定方向性,如,標(biāo)本制備→PCR擴(kuò)增→產(chǎn)物分析→產(chǎn)物處理。

  切記:產(chǎn)物分析區(qū)的產(chǎn)物及器材不要拿到其他兩個工作區(qū)。

  (2)分裝試劑:

  PCR擴(kuò)增所需要的試劑均應(yīng)在裝有紫外燈的超凈工作臺或負(fù)壓工作臺配制和分裝,所有的加樣器和吸頭需固定放于其中,不能用來吸取擴(kuò)增后的DNA和其他來源DNA:

  ①PCR用水應(yīng)為高壓的雙蒸水;

 ?、谝锖蚫-NTP用高壓的雙蒸水在無PCR擴(kuò)增產(chǎn)物區(qū)配制;

 ?、垡锖蚫-NTP應(yīng)分裝儲存,分裝時應(yīng)標(biāo)明時間,以備發(fā)生污染時查找原因;

  (3)實驗操作注意事項:

  盡管擴(kuò)增序列的殘留污染大部分是假陽性反應(yīng)的原因,樣品間的交叉污染也是原因之一。

  因此:不僅要在進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)是謹(jǐn)慎認(rèn)真,在樣品的收集、抽提和擴(kuò)增的所有環(huán)節(jié)都應(yīng)該注意:

 ?、俅饕淮涡允痔?,若不小心濺上反應(yīng)液,立即更換手套;

 ?、谑褂靡淮涡晕^,嚴(yán)禁與PCR產(chǎn)物分析室的吸頭混用,吸頭不要長時間暴露于空氣中,避免氣溶膠的污染;

  ③避免反應(yīng)液飛濺,打開反應(yīng)管時為避免此種情況,開蓋前稍離心收集液體于管底。若不小心濺到手套或桌面上,應(yīng)立刻更換手套并用稀酸擦拭桌面;

  ④操作多份樣品時,制備反應(yīng)混合液,先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好,然后分裝,這樣即可以減少操作,避免污染,又可以增加反應(yīng)的精確度;

 ?、?后加入反應(yīng)模板,加入后蓋緊反應(yīng)管;

 ?、薏僮鲿r設(shè)立陰陽性對照和空白對照,即可驗證PCR反應(yīng)的可靠性,又可以協(xié)助判斷擴(kuò)增系統(tǒng)的可信性;

 ?、弑M可能用可替換或可高壓處理的加樣器,由于加樣器*容易受產(chǎn)物氣溶膠或標(biāo)本DNA的污染,*好使用可替換或高壓處理的加樣器。如,沒有這種特殊的加樣器,至少PCR操作過程中加樣器應(yīng)該專用,不能交叉使用,尤其是PCR產(chǎn)物分析所用加樣器不能拿到其它兩個區(qū);

 ?、嘀貜?fù)實驗,驗證結(jié)果,慎下結(jié)論。

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  PCR擴(kuò)增重要標(biāo)準(zhǔn)

  什么是PCR實驗靈敏度?

  靈敏度指的是PCR擴(kuò)增反應(yīng)能夠檢測到目的基因*小值。研究結(jié)果表明,影響PCR擴(kuò)增效率的因素,如,模板的復(fù)雜程度與完整性、引物純度及其與模板結(jié)合效率、反應(yīng)溫度、DNA聚合酶的熱穩(wěn)定性與擴(kuò)增性能、反應(yīng)緩沖液的離子組成(主要指:陽離子)、反應(yīng)優(yōu)化劑等,均決定PCR實驗檢測靈敏度。在*佳擴(kuò)增條件下,常規(guī)PCR反應(yīng)能夠檢測到pg(10~12g)數(shù)量級目的基因。對于一個特定的目的基因,模板與引物通常都是已經(jīng)限定好的因素。因此,選擇什么樣的PCR反應(yīng)體系(包括:DNA聚合酶與反應(yīng)緩沖液等)就是研究者提高PCR實驗靈敏度的關(guān)鍵因素了。

  與實驗室自配PCR擴(kuò)增體系相比,東盛Taq Mix對反應(yīng)緩沖液中的成分進(jìn)行優(yōu)化,并加入了適當(dāng)比例的反應(yīng)增強(qiáng)劑(PCR Enhancer),提高DNA聚合酶熱穩(wěn)定性,顯著降低模板二級結(jié)構(gòu)對PCR擴(kuò)增性能影響,使得DNA聚合酶處于*適活性狀態(tài),從而獲得比自配體系更高檢測靈敏度。即時反應(yīng)體系中只有幾個目的基因拷貝,也能輕松檢測。

  什么是PCR實驗特異性?

  特異性指的是在PCR擴(kuò)增過程中,專一性擴(kuò)增目的片段而非其他片段的性能。在PCR實驗本身的靈敏度很高,且實驗條件未充分優(yōu)化的情況下,通常會在目的片段出現(xiàn)同時伴隨有其他雜帶,即,發(fā)生非特異性擴(kuò)增現(xiàn)象。模板、引物性質(zhì)及質(zhì)量、反應(yīng)條件控制等均會影響PCR擴(kuò)增特異性。近年,研究結(jié)果表明,緩沖液品質(zhì)(如,離子種類與組成,反應(yīng)優(yōu)化劑等)對保證PCR特異性擴(kuò)增起著不可忽視的作用。一般緩沖液中調(diào)節(jié)氫鍵作用鹽只有KCl,而東盛HSTMTaq Mix的緩沖體系通過反應(yīng)優(yōu)化劑以及KCl/(NH4)SO4鹽離子體系平衡調(diào)節(jié),顯著提高PCR擴(kuò)增特異性,降低背景。

  PCR實驗靈敏度與特異性是一對此長彼消特性,這也決定我們實驗體系調(diào)節(jié)實際上就是需要找到適合實驗靈敏度與特異性平衡點。由于PCR體系中的眾多成分,使得組合較多,篩選工作繁雜。東盛基于靈敏度與特異性分別設(shè)計了PCR Mix和HS Taq Mix,幫您確定大平衡點,如果您需要更細(xì)致的平衡點,請選擇相應(yīng)的Mix Kit系列進(jìn)行微調(diào)。

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